尾静脉注射

当感染全身神经系统时常用尾静脉注射，其具体操作步骤如下：

1. 小鼠固定

a.首先提取小鼠尾巴，将其放在鼠笼盖或手臂上，并进行适当安抚；

b.然后将小鼠装入固定器（可用50ml离心管改造）中，盖紧盖子，并使其尾巴朝外露出；

c.用酒精棉球擦拭小鼠尾巴，使其血管扩张（也可用热水、加热器等）。

2. 病毒注射

a.用生理盐水或PBS将病毒稀释至合适滴度（控制病毒注射体积在100-200 μl）；

b.用1ml注射器吸取100~200 μl病毒；

c.将小鼠尾巴拉直使其红色静脉清晰可见，在距尾尖1/3处进针，缓慢注入病毒后拔出，用棉球按压注射点1min左右以止血。

3. 动物恢复

将小鼠从固定器上取下，放回原饲养笼中。

注意事项：

1. 脑立体定位注射位点精确性要求高，坐标需精确，在正式病毒注射实验前可注射蓝墨水等染料确认注射坐标是否正确；

2. 调平的质量保证了脑区注射点的准确性，确保在开始注射前调整前囟和后囟点位于同一水平面，两点连线左右相同距离的点也处在同一水平面；

3. 操作过程中动作要轻柔，不要盲目用力或暴力操作，避免造成脑损伤、注射器针头折弯等影响实验；

4. 脊髓感染一般每节两个位点即可，若发现感染范围不够可适当增多注射点；

5. 鞘内注射时，异氟烷麻醉起效快苏醒快，但要控制好浓度，过量容易致使小鼠死亡；

6. 鞘内注射时注意控制病毒注射体积，避免鞘内压力增加而造成损伤；

7. 眼部注射时对注射病毒的眼睛做好局部抗菌处理，且下针时注意避开血管；

8. 尾静脉注射在相同剂量的情况下建议注射体积尽量大些，一般每只小鼠注射200ul左右。